WB转膜选湿转or半干转?谁还不会?

  关于我们     |      2024-09-12

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湿转?半干转?选哪种


在Western Blot(WB)实验中,转膜是将电泳分离后的蛋白质从凝胶转移到固相载体(如NC膜或聚偏二氟乙烯膜,PVDF)上的重要步骤。

这篇将总结湿转与半干转,为你解答相关疑问:


什么是湿转?什么是半干转?


各自的优缺点有哪些?


什么情况下适合使用哪种?



  湿转法  

湿转法是将转膜三明治(海绵垫-滤纸-膜-凝胶-滤纸-海绵垫)完全浸泡在转膜缓冲液中,通过电场作用,带负电荷的蛋白向阳极移动,结合在膜上,不再继续移动。


优势




缓冲条件充足

由于整个体系浸泡在转膜缓冲液中,提供了充足的缓冲能力,有利于蛋白质的转移。


转膜效果稳定

由于缓冲液的作用,转膜过程较为稳定,能够得到较为均一的转膜效果。


适用范围广

适用于大小分子量蛋白质的转移,尤其是高分子量蛋白。


缺点



转膜时间较长

转膜时间相对较长,一般1h起步。因为穿过膜和胶的有效电流较少,大多数电流会在缓冲液间侧漏。


消耗缓冲液多

需要大量的转膜缓冲液,同时吸入过量甲醇。


需要控制温度

需要额外的冷却单元来控制温度,操作相对复杂。


常用实验条件



缓冲液

常用的有Towbin转移缓冲液(25 mM Tris、192 mM 甘氨酸、20% 甲醇 (v/v),pH 8.3),也可根据实验需求调整缓冲液成分。


电压/电流

200V 300mA


时间

根据蛋白质分子量大小调整。

蛋白分子量

转膜时间

小于30kDa

30min

30-70kDa

60min

70-140kDa

90-120min

对于分子量大于 100 kDa 的蛋白,建议在转膜缓冲液中添加终浓度为 0.1% 的 SDS。




  半干法  

半干法是利用滤纸吸收缓冲液,将膜、胶和滤纸组成的转膜三明治放在正负极之间,通过电场作用进行转膜。

与湿转类似,膜靠近正极、凝胶靠近负极,这一点很重要。


优势




转膜速度快

由于高场强、高电流的作用,转膜速度较快,通常在半小时以内即可完成。


消耗缓冲液少

仅需少量转膜缓冲液,因此不需要回收,每次用新的转膜缓冲液效果好,且降低了实验成本。


缺点



大分子不适用

不适合长时间转膜,对于大分子量蛋白可能存在转膜效果不佳的问题。


常用实验条件



缓冲液

Towbin转移缓冲液(48mM Tris、39mM 甘氨酸、0.04%SDS和20% 甲醇)或根据需求调整。


电压/电流

20-25V 1-1.5mA


时间

5-30min


Tips

建议使用0.22μm的NC膜,避免转过。